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蘇州千舍生物教你如何培養細胞之細胞消化

更新時間:2020-03-12點擊次數:3382

蘇州千舍生物教你如何培養細胞之細胞消化

細胞培養,尤其是細胞系的培養,就細胞消化而言,多做、善于總結,就可以把細胞養的越來越好

絕大部分細胞消化只要用胰酶潤洗一遍即可:

吸去胰酶后,殘留的那些無法計算體積的附著在細胞表面的微量胰酶在37度一般不到2min足夠消化細胞(絕大部分1min不到)。對于這些細胞原則上不要用胰酶孵育細胞,連續這樣傳代,對細胞傷害很大。簡單的程序是PBS潤洗吸去,胰酶潤洗吸去,然后37度消化。

怎樣算是消化好了呢?

不需要把細胞全部消化成間隔分布很離散的單個圓形才算消化好了,一般你肉眼觀察貼壁細胞層,只要能移動了,多半呈沙壯移動,其實已經可以了。

一般能移動了,說明細胞與培養基質材料的附著已經消失了,細胞之間的附著也已經消失了,細胞已經獨立分布了(雖然沒有呈現很廣的離散分布)。這個時候應該停止消化,不要等到看到鏡下所有細胞都分離得非常好,間隙很大,才停止。

細胞就是*成單個細胞懸液,之后在貼壁的過程中仍然會聚集,這個是貼壁培養的細胞,尤其是腫瘤細胞的一個特性,你可以嘗試,準備100%的單個細胞懸液,貼壁后觀察細胞,仍然是幾個幾個細胞聚集在一起。

一些懸浮培養細胞也是如此,容易聚集,不要過幾個小時就拿出來吹打成單細胞懸液。細胞只要能從基質上脫離下來,即使是成片的(比如Calu-3細胞),吹打不超過20次(一般10次即可),成小規模聚集(10個細胞左右)是正常的,不要再去延長消化時間,等待單細胞懸液出現。

比較難消化的細胞:

潤洗方法5min還不能消化,以結腸癌細胞為例,比如HCT15、LS411和KM12細胞,胰酶消化,一般10 cm 培養皿,一次多加入300ul-500ul就足夠了。即使這樣難消化的細胞,一般不超過5min,即可見細胞成片移動,就應該停止消化。一些正常細胞也會有難消化的時候,比如tsDC細胞,用胰酶孵育,3min左右即可看到成片沙狀移動。

常規的細胞實驗,受消化影響不是很大:

如果不用胰酶去孵育而使用潤洗的方法消化的話(難消化細胞例外)。但少數實驗,比如病毒包裝,對細胞代數,對細胞狀態要求*。這個時候,胰酶消化,就是潤洗,都會對細胞包裝病毒的能力有影響,傳代次數一多,細胞包裝能力就會逐漸下降。這個時候都不用胰酶消化,用一些鹽溶液(不是EDTA液)即可。這些鹽溶液通過影響細胞外基質相關酶的活性,來使得細胞脫離基質附著表面,但不切割任何蛋白。

EDTA的作用:

許多人不用胰酶,只用EDTA,或者用胰酶/EDTA聯合作用。這里要明白,胰酶切割細胞外基質的一些負責粘連和附著的蛋白,而EDTA通過螯合Ca離子,作用于整聯蛋白的活性,所以EDTA的作用更加溫和。有的人在胰酶里添加一些EDTA,或者對付特別難消化的細胞,添加多一些EDTA,就是這個道理。一般不要試圖延長消化時間(如果10min還消化不*的話),而應該想其它辦法。

PBS洗滌:

消化之前用PBS洗滌,是常見的操作,因為血清中含有抑制胰酶的蛋白。對于一些難消化細胞,可以配制不含Ca,Mg離子的PBS,因為這些離子也會抑制胰酶的活性。但對于絕大部分細胞用胰酶或者EDTA溶液潤洗即可消化,不需要配制不含Ca,Mg離子的溶液。

每段時間定期對細胞房、培養箱&水盤、水浴鍋、廢液桶等容易染菌的個角落細菌、真菌等微生物的清除,每次操作完都整理好細胞房,帶好手套、口罩、鞋套,防止人為因素污染。一旦發現污染,及時處理

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NCI-H1650人非小細胞肺癌細胞

H460 人大細胞肺癌細胞

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